Pengujian berbagai eksplan kentang (Solanum tuberosum L.) dengan penggunaan konsentrasi BAP dan NAA yang berbeda


Fitri Widya Lestari(1*), Erni Suminar(2), Syariful Mubarok(3)

(1) Universitas Padjadjaran, Indonesia
(2) Universitas padjadjaran,  
(3) Universitas padjadjaran,  
(*) Corresponding Author

Abstract


Rendahnya produksi kentang di Indonesia disebabkan oleh ketersediaan benih kentang bermutu hasil dari metode konvensional yang kurang memadai. Metode kultur jaringan mampu menghasilkan bibit bermutu dan bebas virus, dalam jumlah banyak serta waktu yang singkat. Penelitian ini bertujuan untuk mendapatkan konsentrasi 6-benzylaminopurine (BAP) dan Naphthalene Acetic Acid (NAA) terbaik pada berbagai eksplan untuk pertumbuhan tunas meriklon kentang (Solanum tuberosum L.) Kultivar Atlantik secara in vitro. Percobaan dilaksanakan pada November 2016 sampai Februari 2017 di Laboratorium Kultur Jaringan Teknologi Benih Fakultas Pertanian Universitas Padjadjaran. Rancangan Acak Lengkap (RAL) digunakan sebagai rancangan percobaan yang terdiri dari dua unit percobaan terpisah yaitu unit eksplan meristem interkalar dan meristem apikal, masing-masing delapan perlakuan dan empat ulangan. Media Murashige and Skoog (MS) digunakan sebagai media dasar dengan penambahan BAP (0,0 mg L-1; 1 mg L-1; 1,5 mg L-1; 2 mg L-1) dan NAA (0,0 mg L-1; 0,5 mg L-1). Hasil menunjukkan konsentrasi BAP 1 mg L-1 merupakan perlakuan yang paling baik dalam menghasilkan jumlah tunas, cabang, daun dan buku pada eksplan meristem interkalar. Pada eksplan meristem apikal, penambahan BAP dan NAA belum mampu meningkatkan pertumbuhan eksplan. Meristem interkalar yang diberi auksin dan sitokinin berpotensi menjadi bahan alternatif eksplan meriklon kentang selain meristem apikal.

 

The production of potato in Indonesia is low due to the limited number of high quality potato seeds produced from the conventional methods. The tissue culture methods can be used to produce high quality and virus-free seeds in more reliable number in a short time. Randomized Completely Design (RCD) was used as the experimental design consisted of two separate trial units namely intercalary meristem and apical meristem explants units with eight treatments and four replications of each. Murashige and Skoog (MS) was used as the base media added with BAP i.e. 0.0 mg L-1; 1 mg L-1; 1.5 mg L-1; 2 mg L-1 and NAA 0.0 mg L-1 and 0.5 mg L-1. Results showed that concentration of BAP 1 mg L-1 generated the best results on the number of shoots, branches, leaves and nodes on meristem intercalary explant. Meanwhile on apical meristem explant, the addition of BAP and NAA had not yet improved the explant growth. Intercalary meristem added with auxin and cytokinin is potential as alternative of mericlone explants material of potato besides the apical meristem.


Keywords


Auksin, Meriklon, Meristem Interkalar, Meristem Apikal, Sitokinin

Full Text:

PDF

References


Abdulmalik, M., Usman, I., Olarewaju, J., & Aba, D. (2012). Effect of naphthalene acetic acid (NAA) on in vitro rooting of regenerated microshoots of groundnut (Arachis hypogaea L.). Bayero Journal of Pure and Apllied Sciences, 5(2), 128–131. https://doi.org/10.4314/bajopas.v5i2.25

Al-Taleb, M. M., Hassawi, D. S., & Abu-Romman, S. M. (2011). Production of virus free potato plants using meristem culture from cultivars grown under Jordanian environment. American-Eurasian J. Agric. & Environ. Sci., 11(4), 467–472. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/236972760_Production_of_Virus_Free_Potato_Plants_Using_Meristem_Culture_from_Cultivars_Grown_under_Jordanian_Environment

Arab, M. M., Yadollahi, A., Shojaeiyan, A., & Shokri, S. (2014). Effects of nutrient media , different cytokinin types and their concentrations on in vitro multiplication of G • N15 ( hybrid of almond • peach ) vegetative rootstock. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 12(2), 81–87. https://doi.org/10.1016/j.jgeb.2014.10.001

Cline, M. G. (1997). Concepts and terminology of apical dominance. American Journal, 84(9), 1064–1069.

Dun, E. A., Ferguson, B. J., & Beveridge, C. A. (2006). Apical dominance and shoot branching. Divergent opinions or divergent mechanisms?. Plant Physiol, 142(November), 812–819. https://doi.org/10.1104/pp.106.086868

Ebad, F. A.-S., El-Sebai, M., El-sadek, A., & El-Kazzaz, A.. (2015). Micropropagation of four potato cultivars in vitro. Academia Journal of Agricultural Research, 3(9), 184–188. https://doi.org/10.15413/ajar.2015.0145

Fukaki, H., & Tasaka, Æ. M. (2009). Hormone interactions during lateral root formation. Plant Mol. Bio., 69, 437–449. https://doi.org/10.1007/s11103-008-9417-2

Gaspersz, V. (1994). Fisiologi tanaman budidaya. Jakarta: UI Press.

George, E. F., Hall, M. A., Klerk, D., & (Eds.), G.-J. (2008). Plant growth regulators I : Auxins, their analogue and inhibitors. In Plant Propagation by Tissue Culture 3rd Edition (pp. 175–204). Springer.

Gunawan, L. . (1992). Teknik kultur jaringan tumbuhan. Bogor: Laboratorium Kultur Jaringan Tanaman. PAU Bioteknologi. Institut Pertanian Bogor.

Husna, A. U., Aziz, L., Siregar, M., & Husni, Y. (2014). Pertumbuhan dan perkembangan nodus kentang (Solanum tuberosum L.) akibat modifikasi konsentrasi sukrosa dan penambahan 2-isopenteniladenia secara in vitro. Online Agroekoteknologi, 2(3), 997–1003.

Karjadi, A. K., & Buchory, A. K. A. (2008). Pengaruh auksin dan sitokinin terhadap pertumbuhan dan perkembangan jaringan meristem kentang kultivar granola. J. Hort, 18(4), 380–384.

Kaur, M., Kaur, R., Sharma, C., Kaur, N., & Kaur, A. (2015). Effect of growth regulators on micropropagation of potato cultivars. African Journal of Crop Science, 3(5), 162–164.

Lakitan, B. (1996). Fisiologi tumbuhan : Pertumbuhan dan perkembangan. Jakarta: PT. Raya Grafindo Persada.

Molla, M. M. H., Nasiruddin, K. M., Khanam, D., & Salam, M. A. (2011). Effect of growth regulators on direct regeneration of potato. In International Conference on Environment and Industrial Innovation (Vol. 12, pp. 205–210). Singapore: IACSIT Press.

Mulyono, D. (2010). Pengaruh zat pengatur tumbuh auksin : indole butric acid (IBA) dan sitokinin: benzil amino purine (BAP) dan kinetin dalam elongasi pertunasan gaharu (Aquilaria beccariana). Jurnal Sains Dan Teknologi Indonesia, 12(1), 1–7.

Pamungkas, F. T., Darmanti, S., & Raharjo, B. (2009). Pengaruh konsentrasi dan lama perendaman salam supernatan kultur Bacillus sp. 2 ducc-br-k1.3 terhadap pertumbuhan stek horisontal batang jarak pagar (Jatropha curcas L.). J. Sains & Mat., 17(3), 131–140.

Sekretariat Jenderal Kementerian Pertanian. (2015). Statistik konsumsi pangan 2015. Retrieved from http://epublikasi.setjen.pertanian.go.id/epublikasi/StatistikPertanian/2015/STATISTIK KONSUMSI PANGAN 2015/files/assets/basic-html/page56.html

Pierik, R. L. M. (1987). In vitro culture of higher plants. London.

Purba, L., Suminar, E., Sobardini, D., Rizky, W., & Mubarok, S. (2017). Pertumbuhan dan perkembangan jaringan meristem bawang merah (Allium ascalonicum L.) kultivar Katumi secara in vitro. Jurnal Agro, 4(2), 97–109. https://doi.org/https://doi.org/10.15575/1344

Salisbury, F. B., & Ross, C. W. (1995). Fisiologi Tumbuhan Jilid 3. Bandung: ITB Press.

Sari, D. A., Slameto, & Restanto, D. P. (2014). Induksi tunas kentang (Solanum tuberosum L.) menggunakan BAP (Benzil Amino Purine). Berkala Ilmiah Pertanian, 1(1), 1–4.

Sitohang, N. (2008). Pembiakan anakan (Sucker) pisang barangan (Musa paradisiaca L.). Jurnal Biota, 13(2).

Sudiyanti, S., Rusbana, T. B., & Susiyanti. (2017). Inisiasi tunas kokoleceran (Vatica bantamensis) pada berbagai jenis media tanam dan konsentrasi BAP (Benzyl Amino Purine) secara in vitro. Jurnal Agro, IV(1), 1–14. https://doi.org/https://doi.org/10.15575/1069

Sugiono, C., & Hasbianto, A. (2014). Perkembangan penggunaan teknik kultur jaringan pada tanaman kentang (Solanum tuberosum L.). In Prosiding Seminar Nasional “Inovasi Teknologi Pertanian Spesifik Lokasi” Banjarbaru 6-7 Agustus 2014 (pp. 435–443).

Sunarto, T., Djaja, L., & Hersanti. (2005). Laporan Penelitian: Pengujian ketahanan kultivar kentang terhadap nematoda sista kuning (Globodera rostochiensis).

Surat Keputusan Menteri. (2000). Deskripsi tanaman kentang kultivar atlantik. Retrieved from https://dokumen.tips/documents/deskripsi-kentang-varietas-atlantik.html

Vernoux, T., Besnard, F., & Traas, J. (2010). Auxin at the shoot apical meristem. Coldspring Hab Perspect Biology, 2(4). https://doi.org/https://doi.org/10.1101/cshperspect.a001487

Wróblewska, K. (2013). Benzyladenine effect on rooting and axillary shoot outgrowth of Gaura lindheimeri Engelm. A. Gray cuttings. Acta Sci.Pol. Hortorum Cultus, 12(3), 127–136. Retrieved from http://www.hortorumcultus.actapol.net/volume12/issue3/12_3_127.pdf

Zulkarnain. (2009). Kultur jaringan tanaman : Solusi perbanyakan tanaman budi daya. Jakarta: Bumi Aksara.




DOI: https://doi.org/10.15575/1348

Refbacks

  • There are currently no refbacks.


Creative Commons Licence

Jurnal Agro (J. Agro: ISSN 2407-7933) by http://journal.uinsgd.ac.id/index.php/ja/index is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.